A. nidulans bibliography authors and keywords

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• Aspergillus Bibliography Authors
  • Adams, T.H. 1 22 129 137 227 228
  • Aguirre, J. 113 194
  • Aidoo, K.E. 2
  • Albertini, A.M. 3
  • Aleksenko, A.Y. 4
  • Alfonso, C. 5
  • Anaya, P. 145
  • Andrade-Monteiro, C. 6 7
  • Andrianopoulos, A. 8
  • Archer, D.B. 9
  • Archer, D.B. 184
  • Arenos, C. 220
  • Arnold, J. 225
  • Arst, H.N. Jr.
  • Arst, H.N.Jr. 10 11 42 207 210 217
  • Aufauvre-Brown, A. 148 198
  • Axtell, S.M. 12
  • Babudri, N. 13
  • Bainbridge, B.W. 14 84 198
  • Baldwin, J.E. 213
  • Balinska, M. 15 131
  • Barnett, Y.A. 56
  • Bartnik, E. 24 165
  • Batnagar, D. 231
  • Bauer, B. 85
  • Bayman, P. 47
  • Beckwith, S.M. 232
  • Begueret, J. 16
  • Benicina M. 130
  • Bennett, J.W. 17 110
  • Berka, R.M. 19
  • Bhatnagar, D. 17 110
  • Bignell, E. 11
  • Bisko, M. 24
  • Blyum, Ya.B. 18
  • Bodie, E.A. 19
  • Bonnefoy, N. 20
  • Bonner, C.A. 21
  • Borgia, P.T. 22 23
  • Borsuk, P. 24
  • Bos, C.J. 152 204
  • Bothe, H. 109
  • Bower, B. 19
  • Brandhorst, T. 25
  • Brewer, J.F. 231
  • Brining, S. 176
  • Brooke, A.G. 6
  • Brown, N.H. 55
  • Brown, R. 33
  • Brown, T.A. 27
  • Brundell, E. 199
  • Brygoo, Y. 156
  • Brzywczy, J. 28 163
  • Busink, R. 230
  • Butchko, R.A.E. 114
  • Buxton, F. 105 106
  • Buxton, F.P. 216
  • Caddick, M.X. 29 30 166
  • Calera, J.A. 31
  • Calil, M.R. 221
  • Campbell, C.K. 32
  • Campbell-Platt, G. 46
  • Cao, X.F. 235
  • Caramori, T. 3
  • Cary, J.W. 33
  • Cazelle, B. 77
  • Cerff, R. 86
  • Chae, K.-S. 34 88 89
  • Champe, S.P. 35
  • Chang, P.K. 17
  • Chang, Y. 161
  • Chatterjee, M. 36
  • Cheetham, B.F. 112
  • Chen, H.M. 37
  • Chen, Z.L. 235
  • Choi, Y. 34
  • Christensen, T. 38
  • Christgau, S. 39
  • Chung, J.H. 89
  • Chung, Y.S. 89
  • Clave, C. 16
  • Cleveland, T.E. 33 95 231
  • Clutterbuck, A.J. 40 41 42 43 212
  • Coenen, A. 44
  • Coggins, J.R. 151
  • Cogoni, C. 45
  • Cohen, J. 198
  • Cole, S.C.J. 213
  • Cook, P.E. 46
  • Copsey, J. 20
  • Cornett, C.A.G. 132
  • Cotty, P.J. 47
  • Crestani, B. 208
  • Croft, J.H. 48 219
  • Cubero, B. 77
  • Dalbøge, H. 39 49
  • Das, T.K. 181
  • Davies, R.W. 50
  • Davis, M.A. 20 133 229
  • De Graaff, L. 68
  • De Lucas, J.R. 52 53
  • De Pauw, B.E. 147
  • de Azevedo, J.L. 73
  • de Graaf, L.H. 51 71
  • de Queiroz, M.V. 73
  • de Vries, R.P. 54
  • Dean, R.A. 33 95
  • Debeaupuis, J.P. 128
  • Debets, A.J.M. 152 204 224
  • Debets, F. 44 219 221 223
  • Denison, S.H. 145
  • Denning, D.W. 87
  • Devenish, R.J. 201
  • Diallinas, G. 197
  • DiDomenico, B.J. 55
  • Dodge, C.L. 22
  • Donnelly, E. 56
  • Doolittle, W.F. 200
  • Doonan, J.H. 57
  • Dowd, P.F. 226
  • Downey, R.J. 58
  • Dunn-Coleman, N.S. 19
  • Dzikowska, A. 59
  • Eagleton, L.E. 22 23
  • Ebina, K. 60
  • Egel, D.S. 47
  • Elias, K.S. 47
  • Endow, S.A. 80
  • Espeso, E.A. 61 62 210
  • Falchtto, R. 107
  • Faugeron, G. 178
  • Faulds, C.B. 63
  • Federici, F. 167
  • Felenbok, B. 64 144
  • Feng, B. 65
  • Fernández, E. 175
  • Fernández, F.J. 66 139 220
  • Fernández-Cañón J.M. 61 67
  • Fernandez-Espinar, M. 68
  • Fernández-Monistrol, I. 179
  • Ferraz, J.L. 126
  • Ferrer, S. 152
  • Fierro, F. 139
  • Fiett, J. 165
  • Fincher, R.R. 236
  • Fischer, R. 69
  • Flannigan, B. 70
  • Flipphi, M.J.A. 54 71 217
  • Fondon, J.W.III 228
  • Forbes, E. 72
  • Ford, C. 37 132
  • Forrés. A. 113
  • Foutz, K.R. 231
  • Friedlin, E. 65
  • Fry, A.M. 188
  • Fungaro, M.H.P. 73
  • Furukawa, K. 82
  • Gadd, G.M. 74
  • Galizzi, A. 3
  • Galván, A. 175
  • Garde, J. 75 209
  • Garen, C. 176
  • Garre, V. 76
  • Gavrias, V. 77
  • Gedeon, C.A. 58
  • Gell, K. 199
  • Gems, D. 43
  • Gibello, A. 152
  • Glatigny, A. 78
  • Gloer, J.B. 226
  • Gniadkowski, M. 24
  • Goggans, K. 96
  • Goldman, G.H. 79
  • Golz, C. 98
  • Gomi, K. 121
  • Goodson, H.V. 80
  • Goosen, T. 209 215
  • Goto, M. 81 82 83
  • Govers, F. 168
  • Greene, M. 55
  • Gregoire, A. 178
  • Gregory, S. 52
  • Griffen, A.M. 84
  • Griffith, J. 225
  • Gruver, C. 146
  • Gutiérrez, S. 66 138 139 220
  • Haas, H. 85
  • Habenicht, A. 86
  • Hah, Y.C. 125
  • Hall, L.A. 87
  • Han, D.M. 34 88 89
  • Han, Y.J. 88 89
  • Hawkins, A.R. 90 91 151
  • Hayashida, S. 81 82 83
  • Heale, J.B. 84
  • Hearn, V.M. 92 93
  • Heldt-Hansen, H.P. 49
  • Hellman, U. 86
  • Hessing, J.G.M. 94
  • Heyting, C. 209
  • Ho, M.-C. 95
  • Hodges, D.W. 96
  • Hodges, R.L. 96
  • Hoekstra, R.F. 44 97 204
  • Hoffmann, T. 98
  • Holden, D.W. 99 148 198 207
  • Holt, C.L. 145
  • Holub, E.F. 204
  • Hondmann, D.H.A. 100
  • Hoog, C. 199
  • Hoogkamp-Korstanje, J.A.A. 147
  • Horiuchi, H. 155 234
  • Hoskins, I.C. 101
  • Howlett, B.J. 229
  • Hoyt, M.A. 102
  • Huerre, M. 107
  • Hynes, M.J. 20 103 104 133
  • Ishikawa, T. 182
  • Ito, K. 182
  • Iwano, K. 182
  • Jahng, K.-Y. 34 88 89
  • Jarai, G. 105 106 216
  • Jaton-Ogay, K. 107
  • Jeenes, D.J. 9 184
  • Jensen, R.A. 21
  • Jonczyk, P. 59
  • Joshi, H.C. 108
  • Jung, G.H. 119
  • Kaldorf, M. 109
  • Kale, S.P. 110
  • Kanabus, M. 24
  • Kang, H.G. 125
  • Kang, S.J. 80
  • Kanlayakrit, W. 81 83
  • Karlin, S. 111
  • Katz, M.E. 112
  • Kawasaki, L. 113
  • Keller, N.P. 114
  • Kelly, J.M. 115
  • Kelly. R. 116
  • Kenealy, W.R. 25
  • Kester, H.C.M. 117
  • Kevei, F. 219
  • Kilmartin, J.V. 118
  • Kim, J.H. 34 89
  • Kim, S.J. 119
  • Kimura, K. 121
  • Kincaid, R.L. 176
  • Kinghorn, J.R. 75 120
  • Kirimura, K. 185
  • Kitamoto, K. 121
  • Kofod, L.V. 39
  • Koga, K. 124
  • Kojima, N. 155 234
  • Kolaparthi, V.S.R. 196
  • Kolattukudy, P.E. 193
  • Koltin, Y. 55
  • Kondo, H. 60
  • Kosalkova, K. 139
  • Kovacevic, S. 213
  • Kozakiewicz, Z. 122 219
  • Kubicek, C.P. 123
  • Kucharski, R. 24
  • Kumigai, C. 121
  • Kusakabe, T. 124
  • Kuwano, E. 81
  • Kwon, K.-S. 125
  • Kwon-Chung, K.J. 161
  • Laborda, F. 53 169 179
  • Lacava, P.M. 126
  • Lacey, J. 127
  • Ladunga, I. 111
  • Lamb, H.K. 90 91
  • Latgé. J.-P. 107 128 208
  • Le Caer, J.P. 59
  • Leal, F. 31
  • Lee, B.N. 129 228
  • Lee, J. 125
  • Lee, Y.H. 88
  • Legisa, M. 130
  • Lewandowska, I. 131
  • Libby, C.B. 132
  • Lints, R. 133
  • Litzky, L.A. 150
  • Liu, Z.H. 235
  • Logsdon, J.M. 200
  • López-Medrano, R. 31
  • Lou, J.L. 134
  • Lu, K.P. 135
  • Lupisella, J. 55
  • Maat, J. 94
  • Maccheroni-Junior, W. 6
  • Macino, G. 45
  • Mackenzie, D.A. 9
  • Makimura, K. 136
  • Marcos, A.T. 66 139 220
  • Marhoul, J.F. 137
  • Markaryan, A. 193
  • Martín, J.F. 66 138 139 220
  • Martinelli, S.D. 140 141 142
  • Martinez-Rossi, N.M. 6 7
  • Marzluf, G.A. 65 85 143
  • Mathieu, M. 144
  • May, G.S. 145 146
  • McCullough, W. 56
  • McGilvray, D. 96
  • McGoldrick, C.A. 145 146
  • McGuire, S.L. 236
  • Means, A.R. 135 176
  • Means, R.L. 176
  • Meis, J.F.G.M. 147
  • Melchers, W.J.G. 147
  • Mellado, E. 148
  • Meng, Z.H. 134
  • Miao, Y.H. 23
  • Miller, J.R. 213
  • Mirabito, P.M. 149
  • Mischke, M. 159
  • Monistrol, I.F. 169
  • Monod, M. 107 128 208
  • Montenegro, E. 66
  • Montone, K.T. 150
  • Moore, J.D. 90 151
  • Moreno, M.A. 152
  • Morikawa, S. 185
  • Morpurgo, G. 13 153
  • Morris, N.R. 79 232
  • Moss, M.O. 154
  • Motoyama, T. 155
  • Mouyna, I. 156
  • Muhlen, G.S. 73
  • Mullins, J. 157
  • Mungroo, J. 210
  • Murayama, S.Y. 136
  • Murillo, F.J. 76
  • Nagle, D.L. 35
  • Nagley, P. 201
  • Natorff, R. 15 163
  • Nigg, E.A. 188
  • Nishiya, N. 182
  • Norbury, C. 158
  • Nuero, O.M. 5
  • Nurse, P. 158
  • O'Connell, M.J. 158 159
  • O'Neal, K.D. 12
  • Ohta, A. 155 234
  • Orejas, M. 210
  • Osmani, A.H. 159 236
  • Osmani, S.A. 149 159 173 236
  • Ostreicher, N. 203
  • Ovejero, M.C. 31
  • Oxenb ll, K. 160
  • Paris, S. 107 128 208
  • Parta, M. 161
  • Pascon, R.C. 73
  • Pascual, C. 152
  • Paszewski, A. 15 28 131 162 163
  • Payne, G.A. 231
  • Payton, M.A. 195
  • Pearce, A.R. 70
  • Peberdy, J.F. 164
  • Pedrogosa, A.M. 169
  • Pelzcar, P. 165
  • Peñalva, M.A. 61 62 67 210
  • Peters, D.G. 30 166
  • Petruccioli, M. 167
  • Phillips, T.D. 114
  • Piccioli, P. 167
  • Pieterse, C.M.J. 168
  • Pimpinelli, S. 13
  • Pinaga, F. 68
  • Pinto, F. 169
  • Pinto-DaSilva, P. 161
  • Pires, L.T.D.A. 170
  • Pizzirani-Klein er, A.A. 73
  • Platt, A. 30
  • Podsinelli, M. 167
  • Pombeiro-Sponchiado, S. 7
  • Pontecorvo, G. 171
  • Prade, R.A. 172 225
  • Pu, R.T. 173 236
  • Puente, P. 31
  • Punt, P.J. 174 218 221 222 223 224
  • Quadroni, M. 107
  • Quesada, A. 175
  • Radford, A. 90
  • Ramon, D. 68
  • Rasmussen, C. 176
  • Rech, E. 73
  • Redl, B. 85
  • Register, E 116
  • Reilly, P.J. 37 132
  • Reimmann, C. 177
  • Reyes, F. 5
  • Rhounim, L. 178
  • Rice, R.N. 112
  • Ried, T. 188
  • Ríos, S. 179
  • Robbins, P.W. 148
  • Roberts, C.F. 91 101
  • Roberts, I.N. 184
  • Robertson, S. 43
  • Rolland, C. 208
  • Romano, N. 45
  • Roper, J.A. 180
  • Rossi, A. 6
  • Roza, M. 94
  • Rulong, S. 161
  • Saha, D. 181
  • Sakagami, H. 60
  • Sakamoto, S. 182
  • Salami, S. 178
  • Salvini, D. 13
  • Samson, R.A. 183
  • Sánchez, O. 194
  • Sanchis, V. 184
  • Sandal, T. 39
  • Santamaría, F. 5
  • Sarangbin, S. 185
  • Sarfati, J. 128
  • Sarkar, S. 210
  • Sarr, B. 114
  • Scazzocchio, C. 77 78 186 187 203
  • Scheider, O. 98
  • Schultz, S.J. 188
  • Schuren, F.H.J. 189
  • Scoffone, F. 3
  • Scotti, C. 3
  • Scudamore, K.A. 190
  • Sealy-Lewis, H.M. 64
  • Seitsma, J.H. 93
  • Semimaru, T. 82
  • Sewall, T.C. 191
  • Sikora, E. 131
  • Singh, N.K. 192
  • Sirakova, T.D. 193
  • Skatrud, P.L. 96 233
  • Skromne, I. 194
  • Smith, D.J. 195
  • Smith, J.E. 2
  • Smith, J.M. 99 207
  • Som, T. 196
  • Sophianopoulou, V. 77 197
  • Sosa, M. 116
  • Specht, C.A. 148
  • Spencer, D.F. 200
  • Spreadbury, C. 198
  • Starborg, M. 199
  • Stepien, P.P. 24
  • Stöffler, G. 85
  • Stolzfus, A. 200
  • Stouthamer, A.H. 221 222 223 224
  • Straffon, A.F.L. 201
  • Strashnyuk, N.S. 18
  • Stringer, M. 202
  • Suarez, G. 152
  • Súarez, T. 203
  • Sugimoto, Y. 124
  • Sutherland, J.D. 213
  • Sutterlin, C. 188
  • Swart, K. 204 209 221
  • Szablewska, I. 131
  • Tahoun, M.K. 205 206
  • Takagi, M. 155 234
  • Takaya, N. 234
  • Tamura, G. 182
  • Tang, C.M. 99 207
  • Tanigawa, W. 83
  • Thau, N. 208
  • Thijs, H. 209
  • Tilburn, J. 11 210
  • Timberlake, W.E. 8 69 172 202 211 212 225
  • Tiwary, B.N. 192
  • Tobin, M.B. 213
  • Togni, G. 107
  • Tomsett, A.B. 75
  • Tomsett, B. 209
  • Torres-Martinez , S. 76
  • Townsend, C.A. 36
  • Tronchin, G. 208
  • Truong, T.M. 12
  • Turcq, B. 16
  • Turner, G. 52 53 214
  • Unkles, S.E. 120
  • Usami, S. 185
  • Vainstein, M.H. 73
  • Valenciano, S. 53
  • Valles, S. 68
  • van Belkum, A. 147
  • van den Berg, P. 223
  • van den Berg-Velthuis, G.C.M 168
  • van den Broeck, H.C. 51
  • van den Broek, H. 215
  • van den Broek, H.W.J. 209
  • van den Broek, P. 215
  • van den Hombergh, H. 106
  • van den Hombergh, J.P. 216
  • van den Hondel, C.A.M.J.J. 94 174 218 221 222 223 224
  • van den Hurk, P. 147
  • van der Veen, P. 71 217
  • van Diepeningen, A.D. 224
  • van Gorcom, R.F.M. 94 218
  • van Ooijen, A.J.J. 51
  • van Peij, N. 159
  • van Rotterdam, C. 94
  • van't Klooster, J. 168
  • VanEtten, H.D. 177
  • Varga, J. 48 219
  • Velasco, J. 66 139 220
  • Veldhuissen, G. 174
  • Verbakel, J.M.A. 94
  • Verdoes, J.C. 221 222 223 224
  • Verweij, P.E. 147
  • Viera de Queroz, M. 203
  • Vinas, I. 184
  • Virden, R. 151
  • Visser, J. 51 54 68 71 100 117 123 216 217 230
  • Vriesema, A. 219
  • Wang, D.S. 134
  • Wang, Y. 225
  • Watson, A.J. 184
  • Weber, F. 230
  • Weglenski, P. 59
  • Wennekes, B. 215
  • Wessels, J.G.H. 189
  • Whitehead, 33
  • Whitehead, M.P. 95
  • Wicklow, D.T. 226
  • Widdick, D.A. 210
  • Wieser, J. 227 228
  • Williams, R.S.B. 229
  • Williamson, G. 63
  • Witteveen, C.F.B. 54 123 230
  • Wolushok, C.P. 231
  • Wood, B.J.B. 2
  • Xiang, X. 232
  • Xu, G. 236
  • Xuei, X. 96 233
  • Yager, L.N. 35
  • Yamagata, S. 28
  • Yamaguchi, H. 136
  • Yanai, K. 234
  • Yang, R. 25
  • Yanko, M. 55
  • Yao, J. 235
  • Ye, X.S. 236
  • Yokota, K. 60
  • Yoo, J.H. 119
  • Yu-Lee, L-y. 12
  • Zimmer, W. 109
  • Zucchi, T.M.A.D. 170
  • Zuker, M. 200
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  Aspergillus Bibliography Keywords

  • alpha-galactosidase 179
  • Acetamide utilization 103 104 133
  • Acetate metabolism 113
  • Acetate regulation 52 103 104
  • Aerobiology 157
  • Aflatoxin 17 36 47 110 114 190 231
  • Alcohol metabolism 64
  • Aldehyde dehydrogenase 86
  • AMA1 element 4 43 116 152 223
  • Amino acid sequence significance 75
  • Amino acid substitutions 37 132 166 213
  • Amino acid transporters 197
  • Aminoacyl tRNA synthetase 192
  • Amylase 19
  • Anthranillate synthase 90
  • Antigenicity 31 92 93 128
  • Antimicrotubule drugs 169
  • Antisense regulation 231
  • Arabinases 71 217
  • Arabinose catabolism 54 230
  • Arabitol deH 54
  • Arginase 59
  • Aromatic biosynthesis 151
  • ARp1 152
  • Aspergillosis 32 128 207
  • Autolysis 5
  • Autonomously replicating plasmid 4 43 116 152 22
  • ß-galactanase 39
  • ß-glucosidase 125
  • ß-lactam antibiotic biosynthesis 138
  • Band-shift assays 166
  • Benomyl 7 69
  • Benomyl resistance 7
  • Biolistic transformation 73
  • Calineurin A 176
  • Calmodulin 176 235
  • cAMP-dependent protein kinase 130
  • Carbon metabolism 100
  • Carbon regulation 52 53 68 61 77 95 103 104 115 144 194 197 217
  • Carbon sources 88
  • Catalase 19
  • Cell cycle 55 57 102 118 135 145 149 158 159 173 188 199 236
  • Cell walls 5 57 92 93 155 176 195
  • Cellulase 182
  • Cephalosporin biosynthesis 139 220
  • Chitin deacetylase 5
  • Chitin synthases 155 148 234
  • Chromatin condensation 158
  • Citric acid production 19 26 123 185
  • Cleistothecia 34 35 89
  • Colchicine 185
  • Conidiation 1 8 22 34 56 69 88 89 110 129 137 149 169 172 191 194 196 202 212 227 228
  • Contig map 225
  • Cotransformation 4 49
  • CreA binding sites 62 95 144
  • Cyclin B 236
  • Cysteine biosynthesis 26 143 163
  • Cytochrome P-450 177
  • Dehydroquinase shikimate dehydrogenase 21
  • Dehydroquinate synthase 151
  • Dinucleotide frequencies 111
  • Diploidization 185
  • DNA binding proteins 62 210 231
  • DNA isolation 6 23
  • Dynein 79 232
  • Echinocandin B 96
  • Ecology 127
  • Electron microscopy 191
  • Electrophoretic karyotype 121 204 221 233
  • Electrophoretic mobility variation 221 233
  • Entomotoxins 226
  • Environmental mutagens 153
  • Enzyme deamidation 37
  • Enzyme inactivation by glucose 53
  • Enzyme processing 213
  • Enzyme production 19
  • Esculin 125
  • Ethanol formation 184
  • Ethanol regulation 90 144
  • Evolution of kinesins 80
  • Evolution of regulatory proteins 90
  • Evolutionary relationships 24 111
  • Exon theory of genes 200
  • Expression cloning 49
  • Extracellular proteins 9 174
  • Extragenic suppressors 79
  • Ferulic acid esterase 63
  • Fluffy mutants 223 228
  • Fluorophenylalanine resistance 192
  • Folate metabolism 15 131
  • Food fermentation 46
  • Food spoilage 70 127 190
  • Footprinting 166
  • Fungal genetics 40 141 153
  • Fungal molecular biology 41 141 211
  • Galactanase 39
  • Galactosidases 19 179
  • GAPDH 86
  • GATA-binding proteins 166
  • Gene cloning methods 223
  • Gene clusters 77
  • Gene conversion polarity 209
  • Gene expression in transformants 45
  • Gene overexpression 38 67 137 224
  • Genetic fingerprinting 14
  • Genetic nomenclature 42
  • Genotoxic agent detection 153 170
  • Germination 56 196
  • Glucoamylase 19 81 82 83 132 222 224
  • Glucose oxidase 19 167 205
  • Glucose 6 phosphate dehydrogenase 215
  • Glucosidase 125
  • Glycoamylase 37 81 82 222
  • Glycoproteins 93
  • Glycosylation 37 81 132 179
  • Heat shock 56 124
  • Hemolysin 60
  • Heterokaryon incompatibility 16 44 97
  • Heterologous gene expression 9 20 22 25 38 50 76 82 158 168 172 177 182 193 201 218
  • History of Aspergillus genetics 72 140 141 153 171 180
  • Horizontal gene transfer 98
  • Hydrophobins 22 161 202 208
  • Hydroxylaminopurine 13
  • Hyphal growth 57 146 195 196
  • Immunogenicity 31 92 93
  • Industrial enzyme production 2 19 26 38 160 164 218
  • Insecticides 226
  • Instant gene bank 43 223
  • Intron origin 200
  • Isocitrate lyase 52 53
  • Isopenicillin N acyltransferase 213
  • Kinesins 80 102
  • Koji molds 46
  • Lipases 19
  • Lipid utilization 113
  • Lysine auxotroph virulence 207
  • Metal toxicity 74
  • Metaloproteases 107 193
  • Methionine in regulation 220
  • Microtubule organizing center 108
  • Microtubules 18 169
  • Mipping 178
  • Mischeduled developmental expression 137 158 191
  • Mitochondrial ATP synthase subunit 8 201
  • Mitochondrial DNA polymorphism 48 219
  • Mitochondrial genes 27
  • Mitosis 145
  • Mitotic recombination 170
  • Molecular karyotype alterations 221 233
  • Molecular phylogeny 80
  • Multicopy transformants 38 71 178
  • Multifunctional protein 151
  • Mutagen sensitivity 145
  • Mutagen testing 13
  • Mutagenesis 205
  • Mutation by transformation 233
  • Mycorrhizal fungi 109
  • Mycotoxins 17 36 47 70 96 110 114 122 134 154 190 226 231
  • Myosin 146
  • N-glycosylation 37 179
  • Neck-filament genes 55
  • Nitrate reductase 109 168 229
  • Nitrate uptake 58 175
  • Nitrogen assimilation 120
  • Nitrogen regulation 29 30 77 85 90 103 104 186 187 194 197
  • Norsolorinic acid 114
  • Nuclear movement 12 57 69 79 232
  • O-acetylhomoserine sulfhydralase 28
  • O-glycosylation 132
  • Oncogene 227
  • Organic acid production 19 26 123 185
  • Overexpression 38 67 129 137 167 205 224
  • Oxidative stress 56
  • Oxygen regulation 10
  • Oxygen requirement 87
  • p34cdc2/cyclin B 236
  • Paba auxotroph virulence 99 207
  • Paraquat 126
  • Parasexual hybrids 206
  • Pathogen detection 136 147 198 150 198
  • Pathogenicity 31 32 99 107 207
  • PCR methods 156
  • PCR pathogen detection 136 147 198
  • Pectate lyases 95 117
  • Pectinolytic enzymes 19 39 95 117
  • Penicillin biosynthesis 61 65 66 67 138 139 206 214
  • Peptidase 216
  • pH regulation 10 11 105 210
  • Phosphofructo-1-kinase 130
  • Phosphoglycerate kinase 101
  • Phosphomannose isomerase 195
  • Phosphorus regulation 10
  • Physical map 225
  • Phytase 19
  • Pisatin detoxificatioin 177
  • Plant wall degradation 63
  • Plasmid cointegration 4 43 152
  • Plasmid replication 4 43 116 152 223
  • Plasmid transfer from plants 98
  • Polarized gene conversion 209
  • Polarized growth 146
  • Polygalacturonase 33
  • Polyketide biosynthesis 3
  • Population genetics 48 97 219
  • Proenzyme cleavage 213
  • Proline utilisation 77 186
  • Promoter analysis 52 124 222
  • Promoter species specificity 189
  • Protease regulation 105 106
  • Proteases 19 106 107 112 193 218
  • Protein domains 82 132 135 151
  • Protein engineering 37 82 132 135 151 166 213
  • Protein inactivation 37
  • Protein kinases 135 159 173 188
  • Protein secretion 37 50 146 164 174 179
  • Protein targetting 174
  • Protoplast fusion 206
  • Purine degradation 187 203
  • Pyruvate decarboxylase 184
  • Quelling 45
  • Quinate pathway 91
  • Recombination 153 205
  • Recombination of plasmids 4
  • Recombinogens 170
  • Regulation: see acetate, acetamidase, carbon, conidiation, ethanol, methionine, nitrogen, oxygen, pH, phosphorus, protease, sulphur
  • Regulator titration 71 222
  • Regulatory protein evolution 90
  • Replicating plasmids 4 43 223
  • Restrictocin 25
  • RFLPs in systematics 14 48 219
  • Ribosomal DNA variation 14 24 48
  • Ribosomal DNA probes for pathogen detection 136 147 150
  • Ribosomal RNA cleavage 25
  • Ribosomal RNA genes 84 165
  • Ribosomes 142
  • Rodletless mutant 161 208
  • Sclerotia 226
  • Secondary metabolism 110
  • Sequence 85
  • Serine carboxypeptidase 216
  • Sexual reproduction 34 35 88 89
  • Shikimate pathway 91
  • Soy sauce manufacture 2
  • Species-specific expression 168
  • Spindle function 118
  • Spore dispersal 157
  • Spore germination 196
  • Starvation-induced competence 181
  • Sterigmatocystin 96 114 134
  • Sulphur amino acids 162
  • Sulphur metabolism 143 163
  • Sulphur regulation 15 131 162
  • Taxonomy 14 48 111 122 183 204 219
  • Toxic metals 74
  • Transcriptional activator 8
  • Transformant copy number 38 178 218
  • Transformant stability 119
  • Transformation 4 38 116 119 178 181 189
  • Transformation, biolistic 73
  • Transformation-induced mutation 233
  • Trifluralin 126
  • Tubulins 118
  • Tunicamycin 179
  • UV sensitivity 56
  • Xanthine dehydrogenase 78
  • Xylanase 19 51 68 94
  • Xylitol deH 230
  • Zinc-finger proteins 210 231

  ORGANISMS

  Fungi other than A. nidulans
  • A. aculeatus 39
  • A. awamori 37 81 82 83 94 132
  • A. clavatus 70
  • A. flavus 114 147 231
  • A. fumigatus 22h 32 60 93 99 107 128 136 147 161 193 198 208
  • A. kawachii 81 82 83 182
  • A. niger 25 26 63 71 105 106 117 123 130 147 205 215 219 221 222 230
  • A. ochraceus 181
  • A. oryzae 2 38 39 46 49 121
  • A. parasiticus 33 110 114 152t 231
  • A. restrictus 25
  • A. terreus 123 147
  • A. tubigenesis 51

  • Ascobolus immersus 178
  • Leptosphaeria maculans: 229
  • Penicillium chrysogenum 65 85 101 139 172 206 213
  • P. notatum 136
  • P. variabile 167
  • Phycomyces blakesleeanus 76
  • Phytophthora infestans 168
  • Saccharomyces cerevisiae 20h 82h 182h 201h 203c
  • Schizophyllum commune 189t
  • Schizosaccharomyces pombe 158t
  • Verticillium albo-atrum 84c
  • Zalerion arboricola 116ht

  Other organisms

  • Bacillus subtilis 3c
  • Chlamydomonas reinhardtii 175c
  • Escherichia coli 193h
  • Homo sapiens 158h 188c 227c
  • Nicotiana tobacum 21c

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  GENES

  A. nidulans
  • abaA 8 191
  • acuD 52 53
  • acuD,E,F 113
  • acyA 67
  • afbA 71s
  • agaA 59
  • alcR 144
  • aldA 86c
  • amdA 133s
  • amdS 20h 49t 104
  • apsA 69s
  • araA 54
  • areA 166
  • areA 85c
  • aromA 21c 91 151
  • benA 18 169
  • benB,C 169
  • benD 7
  • bimA 118
  • bimB,D 145
  • bimC 102 118
  • bimE 199c
  • brlA 22h 129 191 194 228
  • Calmodulin gene 235c
  • chsC 155
  • cnaA 176s
  • creA 144 197 217
  • creB,C 61 217
  • crnA 175c
  • cysD 28
  • dewA 202s
  • fab 137
  • fisA 137
  • flbA 22h 129s 228
  • flbB,C,E 228
  • flbD 227s 228
  • fpaV 192
  • fluG 22h 228
  • gpx 205
  • Heat shock gene 124s
  • het 16 44
  • hxaA 78s 187
  • ipnA 61 67
  • klpA 102 118
  • lys 207
  • manA sequence 195
  • mipA 108
  • myoA 146s
  • niaD 75 109c 116t 209
  • nimA 135 158h 173 188c 236
  • nimXcdc2 159
  • nit-2 sequece 85
  • nsd 89
  • nsdD 34
  • nudA 79 232s
  • nudC 12c
  • pacC 210
  • palH,I 11
  • paba 99 207
  • pelA 95
  • prn 77 186
  • prnB 197
  • prtA 112s
  • qut 91
  • qutR 21c
  • Ras gene 196
  • rRNA, 5S genes 165
  • rodA 22h 161
  • scobA,B,C 161
  • snaA-E 79
  • tRNAphe gene 192s
  • trpC 22h
  • tub 18
  • tubC 7
  • uaX 187
  • uaY 187 203s
  • velA 88
  • wA 3c 22h
  • wetA 172 191

  Other Aspergillus
  • A. awamori glaA 132, exlA 94s
  • A. flavus aflR 231s
  • A. fumigatus rodA brlA fluG flbA trpC whiA 22h
    • chsA-F 148
    • hemolysin 60s
    • HYP1 161
    • mep 107s,
    • Protease 193s
    • rodA 208
  • A. kawachii cellulase 182s
  • A. niger abfA,B, abnA 71s
    • gsdA 215s,
    • glaA 222 224
    • nicB 223s
    • pelB 117
    • pepA,B 105
    • pepC,E 106s
    • pepF 216s
  • A. parasiticus aflR 231s
    • pecA 33
    • pyruvate decarboxylase 184s
    • sec 110
  • A. tubigensis xlnA 51

  Other fungi
  • Acremonium chrysogenum pcbAB, psbC, cefEF 220
  • Candida albicans CDC3,10 55h
  • Leptosphaeria maculans: niaD 229
  • Nectria haematococca PDA6-1 177
  • Neurospora crassa nit-2 85c
  • Penicillium chrysogenum wetA 172
    • nre 85s
    • pcbC pcbAB 65
    • penDE 66
    • pgkA 101
  • Phycomyces blakesleeanus facA 76sh
  • Phytophthora infestans niaA 168sh
  • Saccharomyces cerevisiae PPR1 203c

    Other organisms

    • Homo sapiens Nek2 188
    • Myb 227
    • Mus musculus tsg24 199c
    • Pisum sativum calmodulin 193sh